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生物工学

タンパク質特性・分子量計算機

分子量・pH・温度からタンパク質の正味電荷、流体力学的半径Rh、Stokes-Einstein拡散係数D、沈降係数s、SDS-PAGE推定位置をリアルタイム計算します。

タンパク質パラメータ
計算結果
分子量 (kDa)
Rh (nm)
D (μm²/s)
沈降係数 (S)
正味電荷 (e)
透析MWCO (kDa)
正味電荷 vs pH 滴定曲線
メイン
理論・主要公式
Stokes-Einstein:
\(D = \frac{k_B T}{6\pi\eta R_h}\)

流体力学的半径 (球状近似):
\(R_h \approx 0.066 \cdot MW^{0.333}\text{ (nm)}\)

沈降係数:
\(s = \frac{M(1-\bar{v}\rho)}{N_A f}\)

タンパク質特性計算とは

🙋
このツールで「pI」って計算できるけど、等電点って何ですか?実験で聞いたことはあるけど…。
🎓
大まかに言うと、タンパク質全体のプラスとマイナスの電荷がちょうどゼロになるpHだよ。このpHではタンパク質が溶けにくくなったり、電気泳動で動かなくなったりする。このシミュレーターでは、アミノ酸配列を入力するか分子量と酸性/塩基性アミノ酸の数をスライダーで設定すると、pIがリアルタイムで計算されるんだ。試しに「酸性アミノ酸数」を増やしてみて、pIがどう変わるか確認してみて。
🙋
え、酸性アミノ酸を増やすとpIが下がりました!それはなぜですか?あと、計算結果に出てくる「流体力学的半径Rh」って、分子の実際の大きさとは違うんですか?
🎓
その通り。酸性アミノ酸(アスパラギン酸やグルタミン酸)はマイナスの電荷を持つから、それらが増えると電荷をゼロにするためには周りのpHを低く(=酸性側に)しなければならないんだ。Rhは、溶媒中で動くタンパク質が感じる「実効的な」大きさだね。ツールでは分子量から経験式で推定している。例えば、変性して広がったタンパク質は、同じ分子量の球状タンパク質よりRhが大きくなる。右の「沈降係数」や「拡散係数」も、このRhから計算されているんだよ。
🙋
なるほど!下に描かれる「滴定曲線」は何を見ているんですか?あと、SDS-PAGEの推定位置が出るのは便利そう。これって実験計画に使えますか?
🎓
滴定曲線は、pHを変えた時のタンパク質の正味電荷の変化をグラフ化したものだ。pIで電荷がゼロになることが視覚的にわかるね。実務では、イオン交換クロマトグラフィーの結合/溶離条件を決める時の参考になる。SDS-PAGEの推定は、分子量から理論的な移動度を計算してバンドの位置を予測するんだ。実験前に「このタンパク質はゲルのこの辺に出るはず」と予想できるから、バンドの同定が楽になるよ。ツールで分子量を変えて、予想位置がどう動くか確認してみて。

よくある質問

はい、分子量は必須です。アミノ酸配列がない場合は、分子量のみを入力いただければ、等電点以外のRh、拡散係数、沈降係数、SDS-PAGE位置を計算できます。等電点計算には配列情報が必要です。
球状タンパク質を仮定した経験式に基づくため、実際のゲル泳動とは誤差が生じることがあります。特に膜タンパク質や糖鎖修飾のあるタンパク質では、見かけの分子量が大きくずれる場合があるので注意してください。
主に拡散係数Dと沈降係数sが温度の影響を受けます。Stokes-Einsteinの式では溶媒の粘度が温度依存するため、高温ほどDは大きく、sは小さくなります。正味電荷とpIは温度変化の影響をほとんど受けません。
いいえ、このツールは球状の天然状態タンパク質を前提としています。変性状態では流体力学的半径が大きく変化するため、Rh、D、sの推定値は不正確になります。SDS-PAGE位置も変性状態では異なる挙動を示します。

実世界での応用

タンパク質精製(クロマトグラフィー): 等電点(pI)と滴定曲線は、イオン交換クロマトグラフィーのバッファーpHと塩濃度勾配を設計する上で不可欠です。pIから遠いpHではタンパク質はカラムに強く結合し、pIに近づくにつれて溶出しやすくなります。

電気泳動(SDS-PAGE、等電点電気泳動): 計算されたSDS-PAGE上の推定位置は、実験ゲルでのバンド同定を支援します。また、pIは二次元電気泳動(2D-PAGE)において、等電点電気泳動(IEF)方向の分離を理解する基礎となります。

生体物理化学的解析(DLS、分析用超遠心): 推定された流体力学的半径\(R_h\)、拡散係数\(D\)、沈降係数\(s\)は、動的光散乱法(DLS)や分析用超遠心分離法(AUC)で実際に測定される値です。計算値と実験値を比較することで、タンパク質の会合状態や変性の有無を推測できます。

創薬・製剤開発: タンパク質医薬品の溶解度や安定性はpHに強く依存します。pI付近では凝集や沈殿が起こりやすいため、製剤のpHをpIから十分に離して設定するなどの判断材料となります。

よくある誤解と注意点

このツールを使い始める際に、特に実験系の研究者が陥りがちなポイントをいくつか挙げておくよ。まず「計算されるpIは絶対的な値ではない」ことを理解しておこう。ツールは各アミノ酸の「標準的な」pKa値を使って計算している。でも実際のタンパク質では、局所的な電場や疎水環境の影響で側鎖のpKaが数値から大きくずれることがあるんだ。例えば、リゾチームのグルタミン酸35番は、その特殊な環境のためpKaが約6まで上昇している。だから計算値と実測値が0.5〜1.0 pH単位も違うことも珍しくない。目安として使うのは強力だが、実験条件の最終決定は必ず予備実験で確認してね。

次に、「SDS-PAGEの推定位置はあくまで目安」だ。この計算は標準的な球状タンパク質を想定している。しかし、実際のタンパク質は翻訳後修飾(リン酸化やグリコシル化)で動きが遅くなったり、膜タンパク質のように異常な動きをしたりする。例えば、高度にグリコシル化されたタンパク質は、計算分子量が70 kDaでもSDS-PAGEでは100 kDa付近にバンドが出ることもある。ツールの出力は「変性状態で理想的な挙動をしたらここ」という理論位置だと心得よう。

最後に、「流体力学的半径Rhは構造の情報を反映する」という点を活用してほしい。ツールは分子量から単純な経験式 \(R_h \approx 0.066 \cdot MW^{1/3}\) で計算している。もし実験(例えば動的光散乱法)で測定したRhがこの計算値より著しく大きい場合、それはタンパク質が会合していたり、変性して広がった構造をとっていたりするサインかもしれない。逆に計算値より小さいなら、非常にコンパクトな構造だと考えられる。計算値と実測値を比較することで、サンプルの状態について質的な情報が得られるんだ。

使い方ガイド

  1. 分子量(Da)をmwフィールドに入力。ウシ血清アルブミン(BSA):66,430 Daなど参照値を基準に設定
  2. タンパク質鎖長(アミノ酸残基数)をlenフィールドに入力。平均分子量110 Da/残基で逆算可能
  3. 等電点(pI)をpiフィールドに入力。ウシβ-ラクトグロブリン:pI 5.2など既知値から選択
  4. 測定pH値をphフィールドに入力。生理的条件pH 7.4またはSDS-PAGE泳動緩衝液pH 8.8を指定
  5. 計算ボタン実行で、正味電荷・流体力学的半径(Stokes半径)・拡散係数・沈降係数(S値)を即座に算出

具体的な計算例

ヒト免疫グロブリンG(IgG):分子量150 kDa、pI 6.8、pH 7.4条件での計算を例示。Perrin式により流体力学的半径は約5.5 nm、拡散係数は6.0×10⁻¹¹ m²/s、沈降係数は約6.6 Sと算出。SDS-PAGE(pH 8.8、ジチオスレイトール還元条件)では50 kDa重鎖と25 kDa軽鎖バンドとして検出予測。ラクトフェリン(80 kDa、pI 8.6)をpH 5.0で測定時は正味電荷+18e程度に変化

実務での注意点

  1. 等電点以上のpHでは負電荷優位となり、遠心分析や電気泳動の移動度計算が逆転。医薬品精製の等電点沈澱(IEF)では精密なpI値入力が必須
  2. 糖鎖修飾や金属結合タンパク質は分子量補正が必要。セルロース結合ドメイン付き酵素など融合タンパク質は個別ドメイン分子量を合算
  3. SDS-PAGE推定位置は還元条件(DTT/β-ME処理)と非還元条件で異なるため、実験プロトコルと照合
  4. 高分子量タンパク質(>500 kDa)は会合状態の確認が必須。寡量体形成時は実沈降係数がS値合算と乖離